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質(zhì)粒提取原理及流程

更新時間:2016-09-19點擊次數(shù):15819

質(zhì)粒提取原理及流程
 質(zhì)粒提取試劑盒簡介:
     質(zhì)粒(Plasmid)是一種染色體外的穩(wěn)定遺傳因子,大小從1-200kb不等,為雙鏈、閉環(huán)的DNA分子,并以超螺旋狀態(tài)存在于宿主細(xì)胞中。質(zhì)粒主要存在于細(xì)菌、放線菌和真菌細(xì)胞中,它具有自主復(fù)制和轉(zhuǎn)錄能力,能在子代細(xì)胞中保持恒定的拷貝數(shù),并表達(dá)所攜帶的遺傳信息。
 
質(zhì)粒提取原理及流程:
     較常用的質(zhì)粒DNA提取方法有3種:堿裂解法、煮沸法和去污劑(如Triton和SDS)裂解法。前兩種方法比較劇烈,適用于較小的質(zhì)粒(<15kb)。去污劑裂解法則比較溫和,一般用于分離大質(zhì)粒(>15kb)。堿裂解法是一種應(yīng)用為廣泛的制備質(zhì)粒DNA的方法,其原理為:染色體DNA比質(zhì)粒DNA分子大得多,且染色體DNA為線狀分子,而質(zhì)粒DNA為共價閉合環(huán)狀分子;當(dāng)用堿處理DNA溶液時,線狀染色體DNA容易發(fā)生變性,共價閉環(huán)的質(zhì)粒DNA在回到中性時即恢復(fù)其天然構(gòu)象;變性染色體DNA的片段與變性蛋白質(zhì)和細(xì)胞碎片結(jié)合形成沉淀,而復(fù)性的超螺旋質(zhì)粒DNA分子則以溶解狀態(tài)存在液相中,離心去除沉淀后,就可從上清中回收質(zhì)粒DNA。目前,市面上質(zhì)粒提取試劑盒大多數(shù)都是采取上述的堿裂解方法,不同之處在于純化方式。目前比較常用的純化系統(tǒng)是硅基質(zhì)吸附材料,其原理為在高鹽環(huán)境下質(zhì)粒DNA能夠結(jié)合到硅基質(zhì)上,然后用低鹽緩沖液或水將質(zhì)粒DNA從硅基質(zhì)上洗脫下來。得到的質(zhì)??梢杂糜诿盖?、PCR、測序、細(xì)菌轉(zhuǎn)化、轉(zhuǎn)染等分子生物學(xué)實驗。
 
影響質(zhì)粒提取的因素:
     質(zhì)粒提取的得率和質(zhì)量與很多因素有關(guān),如宿主菌的種類和培養(yǎng)條件、細(xì)胞的裂解、質(zhì)??截悢?shù)、質(zhì)粒的穩(wěn)定性、抗生素、吸附柱的吸附量等。

宿主菌種類
     質(zhì)粒主要存在于細(xì)菌、放線菌和真菌細(xì)胞中,多數(shù)情況下我們是從大腸桿菌中提取質(zhì)粒。大腸桿菌的菌株不同會影響質(zhì)粒提取的質(zhì)量。從宿主菌如DH5α和*0中可以得到高質(zhì)量的質(zhì)粒DNA。HBl01和它的衍生菌株,如TG1和JM系列會在裂解時產(chǎn)生大量的糖類,如果沒有*去除,將抑制后續(xù)實驗中的酶活性,影響質(zhì)粒DNA提取的質(zhì)量。另外,有些菌株有非常高的內(nèi)切酶活性,會降低DNA的得率。因此推薦使用DH5α和*0來提取質(zhì)粒DNA。
 
培養(yǎng)時間
    從固體培養(yǎng)基平板上挑取一個單菌落,接種到培養(yǎng)物中(含有相關(guān)抗生素的液體培養(yǎng)基中),振蕩培養(yǎng)12-16小時。不應(yīng)超過16小時,因為這時細(xì)胞開始裂解,使得質(zhì)粒的得率降低,也會導(dǎo)致質(zhì)粒丟失或質(zhì)粒變異。
 
質(zhì)粒擴增
    氯霉素能抑制宿主細(xì)胞蛋白質(zhì)和DNA的合成,但對松弛型質(zhì)粒的復(fù)制沒有影響。因此,在細(xì)菌培養(yǎng)液中加入氯霉素可提高松弛型質(zhì)粒的拷貝數(shù)。由于氯霉素抑制了宿主細(xì)胞蛋白質(zhì)和DNA的合成,從而抑制了染色體的復(fù)制,但質(zhì)粒復(fù)制所用的酶半衰期較長,故質(zhì)粒仍可繼續(xù)復(fù)制,這樣既可增加質(zhì)粒產(chǎn)量,又可降低細(xì)胞的數(shù)量,使細(xì)菌裂解液的粘度降低而便于操作。常用于擴增的氯霉素濃度為170ug/ml 。
 
抗生素
    在菌株的各生長階段都應(yīng)加入抗生素篩選?,F(xiàn)在用的許多質(zhì)粒都不含有在細(xì)胞分裂時確保平均分配的par位點,無質(zhì)粒的子細(xì)胞在無抗生素時復(fù)制速度遠(yuǎn)大于含質(zhì)粒的細(xì)胞。

幾種常用抗生素的濃度

質(zhì)??截悢?shù): 
      質(zhì)??截悢?shù)常用的定義是指生長在標(biāo)準(zhǔn)的培養(yǎng)基下每個細(xì)菌細(xì)胞中所含有的質(zhì)粒DNA分子的數(shù)目。每個細(xì)胞中的質(zhì)粒數(shù)主要決定于質(zhì)粒本身的起始復(fù)制機制。按照復(fù)制性質(zhì),可以把質(zhì)粒分為兩類:一類是嚴(yán)緊型質(zhì)粒,當(dāng)細(xì)胞染色體復(fù)制一次時,質(zhì)粒也復(fù)制一次,每個細(xì)胞內(nèi)只有1-2個質(zhì)粒,如F因子;另一類是松弛型質(zhì)粒,當(dāng)染色體復(fù)制停止后仍然能繼續(xù)復(fù)制,每一個細(xì)胞內(nèi)一般有20個左右質(zhì)粒,如ColEl質(zhì)粒。一般分子量較大的質(zhì)粒屬嚴(yán)緊型,分子量較小的質(zhì)粒屬松弛型。質(zhì)粒的復(fù)制有時和它們的宿主細(xì)胞有關(guān),某些質(zhì)粒在大腸桿菌內(nèi)的復(fù)制屬嚴(yán)緊型,而在變形桿菌內(nèi)則屬松弛型。

部分質(zhì)粒的拷貝數(shù)

菌液收集及裂解
     細(xì)菌收集可以通過離心來進行,不同的質(zhì)??截悢?shù),菌液量的需求不同,對于低拷貝的質(zhì)粒,要相應(yīng)增加菌液的量。菌液是在堿性環(huán)境下裂解的,由于不同的宿主菌細(xì)胞壁厚薄的差異,細(xì)胞的破壁程度不同, 對于細(xì)胞壁較厚的宿主菌, 先要進行破壁處理:
革蘭氏陰性菌——不用特殊處理,堿裂解時就能有效破壁
革蘭氏陽性菌——溶菌酶處理
酵母和絲狀真菌——酵母破壁酶或玻璃珠
 
      菌液收集、重懸以及宿主菌細(xì)胞破壁后,細(xì)胞在含有RNase A的NaOH/SDS(溶液Ⅱ)中裂解。SDS溶解細(xì)胞膜的磷脂和蛋白成分,使細(xì)胞的內(nèi)容物如染色體、質(zhì)粒DNA和蛋白在堿性環(huán)境下變性。佳的裂解時間是質(zhì)粒大量釋放而沒有釋放染色體DNA的時間,盡量縮短質(zhì)粒暴露在變性環(huán)境中。長時間處在堿性環(huán)境中會導(dǎo)致質(zhì)粒發(fā)生不可恢復(fù)的變性。變性的質(zhì)粒在瓊脂糖膠上跑的較快,而且不能被限制性內(nèi)切酶消化。裂解產(chǎn)物在溶液Ⅲ中被調(diào)整到中性高鹽環(huán)境,高鹽使得變性的蛋白、染色體DNA、細(xì)胞碎片和SDS都沉淀下來,而質(zhì)粒復(fù)性留在上清溶液中。溶液要*混勻以確保沉淀*。為了防止染色體DNA污染質(zhì)粒DNA,要避免劇烈振蕩,以防止染色體DNA被打斷,造成對質(zhì)粒DNA的污染。因為染色體DNA的片段和質(zhì)粒DNA在高鹽條件下,都可以與硅膠膜結(jié)合,在低鹽的條件下,用洗脫液都能從膜上洗脫下來。因此,在裂解過程中要緩慢、輕柔顛倒離心管。

質(zhì)粒DNA分離和純化:
    純化要求
    質(zhì)粒DNA中不應(yīng)存在對后續(xù)實驗中的酶活性有抑制作用的有機溶劑分子或過高濃度的金屬離子。避免其它生物大分子如蛋白質(zhì)、多糖、脂類、基因組和RNA的污染。不同的后續(xù)實驗對于質(zhì)粒純度的要求不同,常規(guī)的分子生物學(xué)實驗(如酶切、測序等)普通純度的質(zhì)粒即可滿足實驗,而對于轉(zhuǎn)染實驗,要求質(zhì)粒的純度較高(如高純度或無內(nèi)毒素)??梢赃x擇不同的質(zhì)粒提取試劑盒以滿足不同的實驗要求。

純化方法
    用硅基質(zhì)材料吸附質(zhì)粒DNA來代替乙醇沉淀的純化方式,提取的質(zhì)粒純度高、操作方便快捷,可選擇的試劑盒有兩種類型,即普通質(zhì)粒提取試劑盒和無內(nèi)毒素質(zhì)粒提取試劑盒。
 
質(zhì)粒DNA的洗脫和收集
參見基因組DNA提取
 
質(zhì)粒的保存
    溶解在洗脫液TE中的質(zhì)粒DNA,也可以貯存在TE緩沖液中(用水溶解的質(zhì)粒只能短期保存,因為實驗室用的純水呈弱酸性,質(zhì)粒在酸性環(huán)境下會發(fā)生磷酸解),4℃短期保存或-20℃和-70℃長期保存,也可在含有質(zhì)粒的細(xì)菌培養(yǎng)物中,加等體積甘油,于-70℃保存 。
 
質(zhì)粒鑒定與評價:
    瓊脂糖電泳檢測
    堿裂解法提取的質(zhì)粒經(jīng)瓊脂糖電泳進行鑒定時,理想狀況是只出現(xiàn)超螺旋—條帶,但在質(zhì)粒提取過程中,由于機械力、酸堿度、試劑等原因,使質(zhì)粒DNA鏈發(fā)生斷裂,可能出現(xiàn)兩條帶或者出現(xiàn)三條帶,這三條帶電泳遷移率從快到慢,分別是超螺旋、開環(huán)和復(fù)制中間體(即沒有復(fù)制*的兩個質(zhì)粒粘連在—起)。如果加溶液Ⅱ后過度振蕩,會在遠(yuǎn)離這三條帶的位置出現(xiàn)條帶,這條帶泳動得較慢,是大腸桿菌基因組DNA的片斷。非常偶然的是,有時候提取的質(zhì)粒會出現(xiàn)4個以上的條帶,這是由于特殊的DNA序列導(dǎo)致了不同程度的超螺旋(超螺旋的圈數(shù)不同)所致。但是,只要質(zhì)粒經(jīng)單酶切鑒定后,只有單一條帶,就證明沒有基因組的污染。
 
酶切檢測
    質(zhì)粒提取后,為了進—步鑒定質(zhì)粒的正確與否,就要進行酶切鑒定,通過與Marker對比,確定質(zhì)粒的分子量大小。
用紫外線分光光度計檢測濃度測定標(biāo)準(zhǔn)為:OD 260 值為1相當(dāng)于大約50ug/ml雙鏈DNA。OD 260 /OD 280 比值在1.7-1.9之間說明所得DNA純度較好。OD 260 /OD 280 比值若低于1.7說明可能有蛋白污染。OD 260 /OD 280 比值若高于2.0則說明DNA有可能已降解。如果洗脫時不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水,比值會偏低,因為pH值和離子濃度會影響光吸收值,但并不表示純度低。

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